Calidad de huevo en reproductoras y su impacto en los nacimientos

Tomado de Engormix.com

AUTOR: Ezequiel Rosales y Sergio Fernández (DSM Nutritional Products de México S.A. de C.V.) y Porfirio Ruiz (Pilgrim´s Pride México)

Uno de los principales componentes de la producción de carne de pollo es el segmento del ave reproductora, siendo los objetivos buscados; la obtención de la mayor cantidad de huevos incubables y pollitos nacidos por ave, así como la máxima producción de pollito de primera. Existen varios factores que inciden en los parámetros productivos de la parvada como; estirpe, salud del ave, nutrición, edad de las reproductoras, peso del huevo, condiciones de almacenamiento, estación del año, así como los parámetros de calidad interna y externa del huevo. En la presente revisión se describen las diferentes medidas de la calidad tanto interna como externa del huevo, así como las condiciones que los afectan y las medidas de manejo que se recomiendan para alcanzar una calidad de huevo que permita lograr el objetivo de la obtención de la mayor cantidad de nacimientos de pollo de primera en la parvada.

Introducción

Los objetivos de producción en el área de reproductoras son; la obtención de la mayor cantidad de huevos incubables y pollitos nacidos, así como producir la máxima proporción de pollito de primera, siendo la calidad interna y externa del huevo, uno de los factores con mayor influencia en la cantidad y calidad de los nacimientos obtenidos.

1. Objetivos productivos de Reproductoras Ross 308 a 64 semanas de edad

Manual Ross 308, 2007

Uno de los problemas actuales en el ave reproductora pesada con una alta tasa de producción de huevo es el deterioro de la calidad del cascarón, causando reducción en el número de pollitos nacidos.

Existen varios factores que afectan la incubabilidad y nacimientos en el proceso de la reproducción estos incluyen: estirpe, salud de la parvada, nutrición, edad de las reproductoras, peso del huevo, condiciones de almacenamiento, estación del año (Yassin et al 2008), así como la calidad interna y externa del huevo.

Calidad de huevo

Un tema que frecuentemente no es tomado en cuenta, ó se minimiza su importancia como factor que impacta el número de pollo nacido por ave es la calidad del huevo, esto debido a que hay otros factores que probablemente su relación con los nacimientos sean medidos con mayor facilidad, sin embargo una gallina en condiciones de campo que produce 175 huevos durante su ciclo de producción; el 2.5% (entre huevo roto, frágil y deforme) de estos huevos van a ser descartados aunado a un efecto negativo de una pobre calidad interna (albuminas acuosas por mal manejo del huevo) pueden impactar en la perdida de 4-6 pollitos nacidos por reproductora.

La calidad del huevo la podemos definir como todas aquellas caracteristicas del huevo que influencian en la aceptación o rechazo del producto por parte del consumidor (Stadelman W.J., 1995), este concepto adaptado al huevo de reproductoras son aquellas caracteristicas del huevo que van a influenciar en la aceptación o rechazo de los mismos para ser incubados.

La calidad del huevo es un término general que refiere a varios estandares que son impuestos al huevo los cuales hacen referencia a la calidad interna y calidad externa, en general estos estandares son enfocados a la limpieza del cascarón, textura del cascarón,forma del huevo, viscosidad de la albúmina forma y firmeza de la yema.

Calidad interna del huevo

La calidad interna del huevo involucra las propiedades funcionales, estéticas y de contaminación microbiológica de la albúmina y la yema. La calidad interna nos indica cual es la frescura del huevo atraves de la medición de la altura de la albúmina (se utiliza un tripie que mide la altura en mm), la frescura se expresa por medio de Unidades Haugh (UH), claras acuosas son de menor calidad, las UH óptimas son de 70-80 en huevos que van a ser incubados (cuadro 1).

La calidad interna se pierde muy rápido en 3-5 días cae de 90 UH a 70 UH si no se almacena adecuadamente, de aqui la importancia del control de la temperatura y humedad del cuarto frio.

Del peso total de un huevo fresco el 32% lo representa la yema, el 58% la albúmina y el 10% el cascarón (Leeson 2005).

La yema en un huevo recién puesto es redonda y firme, conforme el huevo envejece esta absorbe agua de la albúmina lo cual incrementa su talla y causa un estiramiento y debilidad de la membrana vitelina, originando algo así como yemas aplanadas con apariencia moteada.

Tan pronto como un huevo es puesto su calidad interna empieza a disminuir y va ser afectada en mayor grado conforme el tiempo de almacenamiento se incremente, sin embargo la composición química del huevo (albúmina y yema) no cambia mucho.

El mantenimiento de la calidad del huevo durante el transporte y almacenamiento requiere de atención constante de todo el personal involucrado en estas actividades. La calidad del huevo no puede ser mejorada después de ser puesto y los esfuerzos para mantener una buena calidad deben iniciar en este momento.

La disminución de la calidad interna inicia una vez que el huevo es puesto primeramente por la perdida de agua y de dióxido de carbono (CO₂), la perdida de este resulta en cambios en el pH (incremento) del huevo causando rompimiento de la estructura de la proteína de la albúmina gruesa haciéndola mas acuosa. La apariencia nebulosa de la clara (huevo fresco) es debido al contenido de dióxido de carbono, conforme el huevo envejece el dióxido de carbono escapa dando una apariencia transparente de la albúmina comparada con huevos frescos.

El control de dos factores va a minimizar los problemas de mala calidad interna: la recolección frecuente del huevo principalmente en los meses calurosos y el envío del huevo lo más pronto al cuarto frío. Existen seis factores importantes que afectan la calidad interna del huevo, estos factores son:

Edad de la gallina

Temperatura y humedad ambiente

Manejo del huevo

Almacenamiento del huevo

Problemas infecciosos

Presencia de vanadio en el alimento.

Calidad externa del huevo

Se ha dicho siempre que la gallina tiene el sistema más extraordinario para secuestrar, almacenar y secretar calcio en el reino animal. Un huevo en promedio contiene 2.3 g de calcio en el cascarón y cerca de otros 25 mg de calcio en la yema ( Etches, 1987). Si una reproductora moderna pone 185 huevos/ciclo ella va por lo tanto a secretar 430 g de calcio, si asumimos que retiene 50% del calcio que ella consume para la producción de huevos entonces una gallina va consumir 860g de calcio por ciclo, lo que representa el 22% de su peso.

Estudios realizados por Common (1933) mostraron que cerca de 10 días antes del inicio de la producción de huevo las gallinas entran en un balance positivo de calcio (Ca) y fósforo (P), estos cambios mas tardes fueron explicados por la deposición de sales minerales en el hueso medular en desarrollo. La formación del hueso medular coincide con la maduración folicular y la secreción de hormonas ováricas incluyendo estrógenos y andrógenos. El hueso medular es la fuente de reservorio de Ca para la formación del cascarón. Cerca del 60-75% del Ca en el cascarón proviene del alimento y el 25-40% de las reservas del esqueleto (hueso medular), en la gallina la mayor proporción del cascarón es formado durante la noche cuando poco alimento puede ser consumido, en este caso se considera que la gallina esta en un balance negativo de calcio con una fuerte dependencia de la movilización del calcio del esqueleto.

El cascarón esta compuesto aproximadamente de un 94-97% de carbonato de calcio y de un 3-6% de materia orgánica. El cascarón en su parte mas externa esta cubierto por una película delgada de moco que se le llama cutícula la cual es depositada tan solo antes de la puesta del huevo, el cascarón también contiene aproximadamente 8000 poros microscópicos, los cuales le sirven para realizar el intercambio gaseoso.

Numerosos factores afectan la calidad funcional del cascarón, estos factores influyen en la calidad mayormente antes de la puesta del huevo. El grosor del cascarón de un huevo es determinado por el periodo de tiempo que este permanece en la glándula del cascarón (útero) y por la tasa de deposición de calcio durante la formación del mismo, si el huevo permanece poco tiempo en la glándula el grosor del cascarón va ser menor. También algunas estirpes pueden ser capaces de depositar calcio a una tasa mas rápida que otras produciendo así cascarones mas gruesos. El tiempo del día cuando el huevo es puesto va también a determinar el grosor del cascarón, así en general entre mas temprano sea puesto el huevo, el cascarón va ser más grueso. Otro factor como la edad de la gallina va ser determinante en la calidad del cascarón, (conforme la gallina envejece el grosor declina).

Hay 5 mayores tipos de problemas del cascarón del huevo: 1) Rajaduras debido a exceso de presión o golpeteo, 2) Rajaduras debido a cascarones delgados, 3) Huevos reparados, 4) Huevos con cascarones arenosos y 5) Huevos deformes y en farfara (sin cascarón) (Roland and Bryant, 2001).

Rajaduras debido a exceso de presión: Para determinar si el rompimiento del huevo se debe a exceso de presión, golpeteo o por problemas de cascarón delgado nosotros necesitamos analizar la resistencia del cascarón con alguna de las técnicas empleadas para este fin, si el cascarón es fuerte el problema no es nutricional y se puede deber a mal manejo del huevo asociado a un exceso de presión.

Rajaduras debido a cascarones delgados: Para determinar la causa del por que un huevo repentinamente su cascarón llega a ser delgado realmente es complejo y en muchos casos el exceso de huevo roto o huevos fisurados se debe a este problema. Hay muchas causas, pero tres son los nutrientes más probables involucrados, calcio, fósforo y vitamina D₃.

Es conveniente administrar en el alimento de las reproductoras entre un 50 a 70% con partículas de calcio gruesa (4-6mm), esto mejora la eficiencia de utilización del calcio.

Huevos reparados: Son huevos que son fracturados en el interior de la glándula del cascarón antes de la puesta, el problema con los huevos reparados es que ellos requieren 20% de menor presión para que se rompan comparado con un huevo convencional, este problema esta directamente relacionado a situaciones de estres que sufran las gallinas (si una gallina se asusta al momento de las primeras horas de formación del cascarón es muy probable que se fisure la cascara y aunque se repara el huevo en el utero este nunca llega a sellar de manera adecuada) y a la edad de la gallina. La mayoría de estos huevos son puestos entre las 6 y 8 am (Roland, 1984).

Huevos con cascarones arenosos: Estos huevos son aquellos con contenidos de pequeños depósitos o protuberancias de material calcáreo sobre la superficie del cascarón. Estos depósitos cuando se desprenden (que suele suceder con facilidad durante el manejo del huevo) dejan un agujero en el cascarón con perforación de la fárfara creando un potencial de contaminación y de perdida del contenido originando que sean descartados.

Huevos deformes o en farfara: Normalmente son debido a problemas infecciosos virales como Newcastle, Bronquitis infecciosa y Sindrome de baja postura ademas de situaciones extremas de estres que sufran las gallinas.

Huevos que presentan alteraciones en la calidad del cascarón representan perdidas de pollitos potenciales para llegar a las casetas de engorda debido que estos huevos tienen diferentes porcentajes de nacimientos (cuadro 2).

Es muy comun que huevos con presencia de microfracturas (rajadura en forma de araña) sean enviados a la incubadora ya que ellos fisicamente se ven perfectos sin embargo conforme se deshidrata el huevo (segundo o tercer dia) estas se hacen aparentes y varias ocasiones estos huevos son incubados causando un riesgo de contaminación y afectando los nacimientos de los lotes (cuadro 3). Durante la incubación lo ideal es que un huevo pierda el 12% de su peso inicial, cuando el huevo pierde un 20% o mas causa incremento de mortalidad y subsecuente deshidartación del embrión (Barnett et al., 2004).

Datos de campo del 2006 realizado en una de las mayores operaciónes de reproductoras en México nos muestran el impacto de algunas alteraciones del cascarón sobre los nacimientos, el estudio incluyo 648 huevos deformes, 648 huevos blancos, 1944 huevos microfracturados y 2592 huevos convencionales con diferentes edades de las reproductoras en diferentes meses del año. En cuanto a los nacimientos obtenidos en cada alteración del huevo fueron 74.07%, 75.77%, 43.27% y 82.98% para huevos deformes, blancos, microfracturados y convencionales respectivamente (cuadro 4).

Factores que afectan la calidad del cascarón

Los factores más comunes asociados a influir en los problemas con la calidad del cascarón se han agrupado en seis categorías, en este ocasión solo se mencionaran:

1. Infecciosos

2. Genéticos

3. Ambientales

4. Fisiológicos y de manejos

5. Edad de la parvada y

6. Nutricionales

Pigmentación del cascarón y perdida del mismo (huevos blancos)

Los pigmentos biliverdina-lX y protoporfirina-lX se sintetizan en el utero 3-4 hrs antes de la puesta y estan integrados en su mayor parte en la cuticula. En reproductoras el color del cascarón no es tan uniforme e intenso como en ponedoras comerciales. En el campo podemos observar parvadas con presencia de huevos blancos sobre todo cuando los lotes de reproductoras tienen mas de 50 semanas de edad, estos huevos de acuerdo a observaciones de campo en el 25-50% presentan resistencias inferiores a huevos convencionales (1800 a 2600g de presión/mm² de cascarón vs 3100 de huevos con resistencia adecuada) causando que sean descartados en su mayoría debido a que los nacimientos son bajos (no mayor al 70-75%), sin embargo si se tiene personal entrenado se pueden rescatar un buen porcentaje de estos huevos y pueden ser incubados.

Las causas mas comunes por las que se presentan huevos despigmentados (huevos blancos) son las siguientes:

Estrés (calórico o de manejo- por liberación de la epinefrina)

Problemas infecciosos virales (SBP,NC,BI)

Edad de las parvadas (tamaño del huevo, mayor edad mayor presencia)

Medicamentos (sulfas y nicarbazina-5mg/día)

Vanadio

Calidad interna, almacenamiento del huevo y su efecto en los nacimientos

Conforme un huevo envejece pierde CO₂ y humedad a través de los poros incrementando el pH. El pH de la albúmina va de 7.5 en un huevo fresco a 8.5 en huevos con dos días de almacenamiento, en caso de la yema el pH es de 6 en huevo fresco y sus cambios son influenciados por la clara.

Estos cambios de pH causan perdida de la rigidez en la estructura de las proteínas resultando en claras acuosas. Es conocido que la viscosidad de la albúmina (unidades haugh) decrece y el pH de la misma se incrementa durante el almacenamiento.

La calidad interna del huevo es muy buena al día de puesto y los principales cambios ocurren los 1ros 4 días, sin embargo los mejores nacimientos ocurren de huevos que han sido almacenados 1 y 2 días.

Algunas investigaciones demuestran que el embión inicia las alteraciones de la albúmina, de esta forma optimiza su ambiente para la incubación.

En la grafica de la figura 1 se puede observar que el % de nacimientos disminuyo linealmente del día 2 en adelante conforme aumentó el pH y disminuyo la altura de la albúmina, lo que representa un 0.7% de perdida diaria (figura 1).

Estudios de Sauveur et al (1967) y de Gillespie et al (1987) demostraron que el pH optimo en las fase iniciales de la incubación en el huevo oscilaba entre 8.2 y 8.8 y que posiblemente esto tenga un efecto positivo en el desarrollo y sobrevivencia del embrión en las etapas tempranas.

Se sabe que los efectos mas severos del almacenamiento ocurren después del 7mo día donde se puede perder hasta 1% por dia los nacimientos si las condiciones de almacenamiento no son las adecuadas, sin embargo desde el 4to día hay un efecto negativo.

Los efectos negativos de almacenar el huevo por mas de 7 días son observados en los pollitos que nacen y van a granjas donde terminan hasta con 200g menos (estudio en el 2004-Bélgica).

Cuando un huevo es puesto el embrión ya tiene 24 hrs de desarrollo, por lo que el huevo tiene que ser manejado con cuidado desde su recolección hasta llegar a la planta incubadora por lo tanto uno de los factores con mayor impacto sobre los nacimientos son las condiciones de manejo del huevo antes de la incubación, hay que llevar el huevo lo mas pronto posible al cuarto frío y de ahí a la incubadora.

La mortalidad embrionaria temprana ocurre con mas frecuencia debido a problemas de manejo inadecuado de la temperatura, humedad y manipulación del huevo. Una vez que el huevo es clasificado y desinfectado este tiene que ser almacenado a 18-20°C.

Leeson y Summers sugieren que como el huevo presenta distintas caracteristicas interna y externa de acuerdo a la edad de la gallina tambien requiere de un manejo diferente (cuadro 5).

El embrión muy joven es sensible a la temperatura de almacenamiento, humedad y manejo físico, por lo tanto el transporte tiene que ser cuidadoso, no hay que estresar al embrión con movimientos bruscos del camión. El embrión entre el día 1 y 2 es muy sensible al daño físico. El camión debe tener buena temperatura y humedad si el huevo viaja mas de 6 hrs.

De acuerdo a Lotte Van de Ven (2005) el huevo tiene que ser almacenado a diferentes temperaturas y porcentaje de humedad para disminuir los impactos negativos de los dias de puesto (cuadro 6).

En un estudio de Yassin et al (2008) observo que la incubabilidad es infuenciada por el tiempo de almacenamiento del huevo y esto era debido a que la calidad interna del huevo decrece por lo cual la actividad metabolica del embrion es afectada teniendo un impacto en su desarrollo y viabilidad al nacimiento. Si los huevos son almacenados la incubabilidad decrece en diferente porcentaje en relación a la edad de la parvada. En este estudio la incubabilidad de huevos proveniente de reproductora joven (25-30 semanas) se vio mas afectada por los dias de almacenamiento que para el grupo de reproductras adultas (51 a 60 semanas) y la perdida de nacimientos por dia almacenado entre el dia 8 al 14 fue de 0.8% vs 0.4% respectivamente (figura 2).

Figura 1. Cambios de pH y altura de albúmina durante el almacenamiento del huevo, datos basados en 5 estudios (Lotte van de Ven, 2005)

Cuadro 1. Calidad de la albúmina de huevo de reproductoras y su relación con los nacimientos.

Unidades Haugh	Denominación	Incubabilidad
90	Excelente	Buena
80	Muy buena	Buena
70	Buena	Buena
65	Pobre	Regular
60	Mala	Mala

Cuadro 2. Nacimientos de pollos provenientes de huevos con diferentes características físicas

Clasificación	Perdida de incubabilidad, %
Deformes	12-15
Perdida de pigmento	20-30
Ligeros depósitos de Ca	5-10
Con muchos depósitos de Ca	15-20
Arrugado	50-100
Acinturado	80-100
Huevo arenoso	80-100
Un lado plano	90-100

Adaptado de: Broiler Breeder Production, 2000

Cuadro 3. Presencia de microfracturas en el huevo y su relación con los nacimientos.

Variable	Huevo normal	Huevos microfracturados
Nacimientos, %	80.92a	56.43b
Mortalidad embrionaria temprana, %	7.92	13.94
Mortalidad embrionaria tardía, %	4.62b	15.53a

P<>

Barnett et al.,2004

Cuadro 4. Impacto de algunas alteraciones del huevo sobre los nacimientos. Estudio de campo de una empresa comercial, 2006, Ross 308.

Dias de incubación	0 a 5	6 a 10	11 a 21	Total	Infertil	Nac.	Huevo*	Perdida de
	%	%	%	%	%	%	Contami	humedad
Huevo convencional	6.63	1.01	3.80	11.44	7.46	82.98	1.23	15.43
Huevo deforme	6.32	1.70	8.63	16.65	8.02	74.07	2.46	19.28
Huevo blanco	6.30	0.61	9.1	16.03	7.40	75.77	NE	17.87
Huevo microfracturado	22.46	5.18	17.95	45.59	7.72	43.27	2.9	22.9

NE: No evaluado; * Huevo contaminado

Cuadro 5. Cambios de la calidad interna del huevo relacionados a la edad ( Leeson and Summers, 2000)

Edad de la reproductora	Características del huevo	Manejo del huevo
22 - 35 sem	Huevos pequeños Cascarón resistente Albúmina densa	Mas tiempo almacenado Almacenado a mayor temperatu Menor humedad en el cuarto de almacenamiento
35 - 45 sem	Tamaño optimo de huevo Buena resistencia cascarón Albúmina adecuada	Almacenamiento normal de 2 a 5 días con 80% de humedad en el cuarto
45 - 65 sem	Huevos grandes Cascarón delgado Albúmina acuosa	No mas de 3 d almacenam Bajar temp de almacenam Aumentar humedad 85°C

Cuadro 6. Condiciones óptimas durante el almacenamiento del huevo (Lotte van de Ven, 2005)

Días almacenamiento	Temperatura (°C)	Humedad (%)	Volteo	Posición (Punta)
1-3	18-21	70-80	No	Abajo
4-7	15-18	70-80	No	Abajo
> 7	10-12	80-88	Si	Arriba

Figura 2. Impacto de los dias de almacenamiento del huevo y edad de la reproductora sobre los nacimientos. Yassin et al, 2008

Conclusiones

La perdida de la calidad externa (defectos del cascarón) e interna del huevo (incremento del pH, claras liquidas y perdida de agua) debido a problemas de mal manejo del huevo o mayor tiempo de almacenamiento del huevo tendran un efecto negativo en los nacimientos y la calidad del pollito. Los huevos con alteración en su forma, estructura y tamaño tienden a presentar mayor mortalidad embrionaria resultando en menores pollitos nacidos.

La calidad del huevo no la podemos mejorar al momento en que el huevo es puesto pero podemos disminuir la perdida de esta con menor tiempo de almacenamiento, temperatura y humedad adecuada y debido a que el embrión es muy sensible en los primeros dos dias postovulación es muy importante manejarlo con mucho cuidado durante todo el periodo que pasa antes de ser incubado.

Literatura citada

Barnett, D.M., B.L. Kampula, R.L. Petryk, N.A. Robinson, R.A. Renema and F.E. Robinson. 2004. Hatchability and early chick growth potential of broiler breeder eggs with hairline cracks. J.Appl.Poult.Res. 13:65-70

Bell, D.D., & W.D. Weaver Jr., 2001. Commercial chicken meat & egg production. 5^th Ed. Kluwer Academic publishers.

Etches, R. J. 1987. Calcium logistics in the laying hens. Journal of Nutrition, 117, 619-628.

Gillespie, J.l and s. Mchanwell. 1987. Measurement of intraembryo pH during early stages of development in the chick embryo. Cell Tissue Res. 247:445-451.

Haugh R.R. 1937.The Haugh unit for measuring egg quality. U.S. Egg Poultry Magazine, No.43.

Kramer, A., 1951. What is quality and how it can be measured: From a food technology point of view. In market demand and product quality. Mktg. Res. Workshop rept., Michigan State College.

Leeson, S and J.D. Summers. 2005. Commercial Poultry Nutrition. 3^rd edition. Ontario Canada.

Leeson, S & J.D. Summers. 2000. Broiler Breeder production. Guelph, Ontario, Canada, University books.

Lotte van de Ven .2005. Storage of hatching eggs in the production process.International Hatchery Practice - Volume 18 Number 8.

Roland, D.A., Sr.,1984. Egg shell quality I. The body-checked eggs. World´s Poultry Sci. 40:250-254.

Roland, D.A and Bryant M., 2001. Nutrition and Feeding for Optimum egg shell quality. Poultry Science department. Auburn University.

Stadelman, W.J., & O.J. Cotterill., 1995. Egg Science and Technology., 4^th ed. Haworth Press Inc.

Yassin, H. A. G. J. Velthuis; M.Boerjan and R.B.M.Huirne. 2008. Field study on broiler eggs hatchability. Poult Scie 87:2408-2417.

Coccidiosis: coccidiostatos o vacunas?

Tomado de Engormix.com

AUTOR: Mauricio E. De Franceschi, Médico Veterinario, UBA. Dr. en Ciencias Aplicadas. Univ. Nacional de Luján. Profesor Titular de Producción Animal III y Dtor. de la Carrera de Especialización en Producción Avícola. Univ. Nacional de Luján. Argentina

Parasitosis aviares.

Los parásitos de las aves comerciales pueden ser clasificados en:

• Parásitos internos o endoparásitos

- Protozoos: Coccidios, Histomonas

- Helmintos: Platelmintos: Cestodes y Trematodes

Nematelmintos: Ascaris, Heterakis y Capilarias.

• Parásitos externos o ectoparásitos

- Insectos: Moscas, Mosquitos, Cascarudos, Piojos, Pulgas

- Arácnidos: Garrapatas, Acaros

Entre los protozoos, sin duda los de mayor importancia productiva, en aves comerciales, son los Coccidios.

Coccidios

Grupo de protozoarios del subphylum Apicomplexa pertenecientes al género Eimeria y cuyas principales características son:

• Poseen especificidad de especie y de tejido.
• Complejo ciclo de vida con formas de desarrollo con una fase asexual y una fase sexual.
• Algunas de sus formas de desarrollo poseen un complejo apical que les permite su penetración en la célula del intestino del hospedador (figuras 1y 2).
• La forma infectante es el oocisto u ooquiste.
• Contagio por coprofagía (figura 3).

Las especies de eimerias que afectan a las aves comerciales son seis intestinales: E. acervulina; E. mitis; E. maxima; E. necatrix; E. praecox; E. brunetti; y una especie cecal: E. tenella.

La coccidiosis puede ser clínica, con diversos grados de intensidad, de 1 a 4 según la escala de lesiones de Johnson y Reid, con importantes consecuencias productivas: menor crecimiento, incremento del ICA y deficiencias de pigmentación.

Figuras 1: Esquema del complejo apical en el proceso de endocitosis.


Figura 2: Merozoíto mostrando los organoides celulares. Se destacan aquellos que integran el complejo apical (rhoptrias, micronemas y conoides).

Por su parte la Coccidiosis subclínica, producida por E. acervulina; E. maxima y muy probablemente también E. mitis, ha adquirido particular importancia en las últimas décadas, en función de la relativa resistencia, frecuente a las drogas anticoccidiales con consecuencias productivas no siempre demostrables, por la gran cantidad de variables que intervienen en la crianza de las aves y que no permiten distinguir fehacientemente el eventual origen de disminución en los parámetros productivos de un lote.

Figura 3 Figura 4

Figura 3: Los oocistos inmaduros son excretados junto con las heces y en presencia de humedad y temperatura adecuadas maduran en la cama del galpón transformándose en ooquistes maduros con 4 esporocistos que contiene en su interior 2 esporozoítos cada uno.

Por su parte el ciclo de vida puede ser esquematizado de acuerdo a lo que se muestra en la figuras 4 y 5.

Figura 5

Las aves ingieren, junto con el alimento, un número indeterminado de ooquistes maduros. La temperatura del organismo y la acción de los jugos digestivos favorecen la disolución de la membrana celular de los parásitos. Se produce así la liberación de los esporozoítos contenidos en su interior. Esta misma temperatura, y el medio húmedo del intestino, pueden iniciar el ciclo de aquellos oocistos que fueron ingeridos incompletamente maduros.

Liberados los esporozoítos se produce la invasión de la mucosa intestinal con su consiguiente penetración en las células epiteliales. Comienza su crecimiento y adopta una forma ameboide, redondeada u ovalada que recibe el nombre de trofozoíto.

El trofozoíto tiene su correspondiente protoplasma y núcleo. Este último se divide y rodea de protoplasma dando lugar a la formación de un nuevo cuerpo denominado esquizonte. Su crecimiento se detiene y los elementos resultantes de la división constituyen los merozoítos, con la formación de los cuales concluye la primera fase del ciclo de vida de los coccidios que es asexuada y recibe el nombre de esquizogonia cuyo significado es generación por división.

Los merozoítos se liberan de la envoltura esquizóntica, destruyen la célula epitelial del huésped, e invaden la luz intestinal para introducirse en nuevas células sanas y repetir el ciclo de crecimiento trofozoítico y luego esquizogónico. Las generaciones asexuadas o esquizogonias pueden ser varias y, en todos los casos, la liberación de merozoítos está estrechamente ligada a las lesiones y a la disfunción intestinal (figura 6)..

Para que el ciclo se complete es necesaria la evolución sexuada. Los merozoítos de una de las generaciones esquizogónicas, al invadir nuevas células epiteliales, inician una fase de crecimiento distinta a la de trofozoíto Esta es la fase gametogónica de la cual se originan gametocitos machos (microgametos) y hembras (macrogametos). Los primeros también llamados espermatozoides fecundan a los macrogametos u óvulos dando origen a un cigoto que crece y se transforma en un blastómero aislado, envuelto en una doble membrana, que constituye el oocisto. Esta segunda etapa del ciclo evolutivo constituye la fase sexuada o esporogonia. El oocisto se elimina hacia la luz del intestino, sale del organismo con las deyecciones y termina su evolución fuera de éste donde se producen condiciones favorables para su maduración o esporulación. La capacidad de penetración de los esporozoítos y merozoítos a la célula intestinal está dada por el, ya descripto complejo, apical.

Lesiones:

Las diversas especies producen lesiones más o menos características las que, sin embargo, salvo E. acervulina hacen necesario un diagnóstico más preciso para su identificación.

Por su parte la coccidiosis subclínica cursa en forma asintomática y sin lesiones.

Figura 6: Esquizontes de Eimeria, liberando merozoítos.

Curso de la enfermedad:

La duración de un brote es generalmente de alrededor de 8 días. Entre 4^to y 5 ^to día, el 80 % de las aves se encuentran afectadas.

Considerando que el período crítico de un brote ocurre entre la tercera y quinta semanas y que existe un tiempo de recuperación de 10 a 15 días, el período de compensación de 2 a 3 semanas no es suficiente para que el animal llegue totalmente recuperado a la edad de faena, cuando ésta se sitúa entre los 45 a 50 días.

Diagnóstico: Un diagnóstico correcto contempla la observación de las lesiones y la identificación de especies (tabla 1).

Tabla 1: Criterio para la identificación de especies

En Argentina se llevaron a cabo algunos relevamientos con el objeto de establecer la frecuencia de las diversas especies. El último, realizado por González, H. y col. muestra los siguientes resultados (gráficos 1 y 2).

Gráfico 1: Estudio de la presencia de coccidiosis en granjas de Buenos Aires y Entre Ríos (período 2003/04).

Gráfico 2: Frecuencia de presentación de las diversas especies de eimerias en Buenos Aires y Entre Ríos (período 2003/04)

El diagnóstico adquiere mayor precisión mediante algunas técnicas sencillas de laboratorio que contemplan la observación directa de los ooquistes y las formas de desarrollo del parásito, ya sea en cama, en materia fecal o en el intestino del animal.

Examen coproparasitológico: realiza el recuento de ooquistes por gramo de materia fecal (OPG) se utiliza para ello la Cámara de Mc Master o el hemocitómetro o camara de Neubauer.

Análisis de cama. Realiza el recuento de ooquistes por gramo. También aquí pueden utilizarse ambas cámaras.

Diagnóstico de la coccidiosis subclínica.

En función de la carencia de síntomas y lesiones solo puede ser detectada mediante la observación directa in situ de los ooquistes y las formas de desarrollo (F de D), para ello se utiliza el Método de Raspajes Seriados de la Mucosa Intestinal (MRSMI) desarrollado por Mattiello y col. (figura 7).

x: raspajes en duodeno; 0: raspajes en yeyunoíleon;

+raspajes en ciegos.

Entre porta y cubre

40 a 100 X

Se realizan 4 raspajes en duodeno y 4 en yeyunoíleon para determinar positividad o negatividad diagnóstica con un nivel de confianza del 98 % según Mattiello y col.

Se monitorean 5-6 animales cada 10.000, correspondientes a un solo galpón, de una misma granja. Este muestreo confiere una confianza del 97,5 % cuando la prevalencia de la enfermedad se encuentra en el 50 % del lote.

El MRSMI es el elegido para el diagnóstico de la coccidiosis subclínica ya que posee una gran eficiencia por su sensibilidad y especificidad, en función de que permite detectar formas de desarrollo y oocistos y ratificar o descartar lesiones intestinales.

En un estudio epidemiológico realizado por De Franceschi y Barrios en donde se determinó la relación de diagnósticos clínicos y análisis coproparasitológicos, se observó que el 11,40 % de recuentos negativos corresponden a casos subclínicos por el MRSMI. En el gráfico 3 se evidencia dicha relación.

Gráfico 3: El 11,40 % de recuentos negativos corresponden a casos subclínicos por el MRSMI

Control de la coccidiosis aviar:

Es posible afirmar que:

l Los daños de la enfermedad no desaparecen con la terapéutica.

l Sus efectos son más marcados a medida que crecen las aves.

l Por ello es mejor tener un nivel controlado de coccidios al inicio.

l Para el desarrollo de la inmunidad adecuada y para dar lugar al crecimiento compensatorio.

El Tratamiento se realiza a través de sulfas entéricas o productos de síntesis química

La prevención mediante anticoccidianos y vacunas.

Los anticoccidianos, a su vez pueden ser de síntesis química y antibióticos ionóforos

- síntesis química y

- antibióticos ionóforos

Anticoccidianos (Coccidiostáticos-Coccidicidas)

l Existen más de 15 drogas disponibles, pero las más usadas no superan las 7 u 8.

l Los programas anticoccidiales, buscan retrasar la aparición de resistencias. Se consideran dos criterios: 1) Dual o Shuttle Program, se realiza el cambio de producto junto con el alimento (Ej.: Salinomicina-Nicarbazina) y 2) Alternado o Switch Program, se realiza el cambio cada dos o tres crianzas.

l Los ionóforos en general causan falla en el transporte de los iones Na, K, Ca y Mg a través de la membrana celular, tanto en el ciclo asexual como en el sexual, formando un complejo soluble lipídico con los cationes. Las drogas y las formas coccidiales deben estar en el lúmen intestinal; las primeras son selectivamente citotóxicas para los coccidios siempre que el hospedador se encuentre altamente parasitado.

Productos auxiliares. Las restricciones crecientes en el uso de estos productos dieron lugar a algunas alternativas. Entre ellas pueden citarse: desinfectantes de cama; probióticos; prebióticos; Betaína y extractos vegetales; los que en general, mejoran la integridad intestinal, limitan el crecimiento de clostridios y estimulan la inmunidad

Las citadas restricciones responden a: restricciones en salud pública y el medio ambiente; falta de desarrollo de nuevas moléculas; presión de consumidores para incrementar la seguridad de los alimentos y eficacia reducida de las drogas disponibles, en especial por el desarrollo de resistencias.

Vacunas:

Es necesario antes de abordar el estudio de las vacunas considerar brevemente los mecanismos en la inmunidad anticocidial:

l Sistema inmunocompetente asociado al intestino: tonsilas cecales, bolsa de Fabricio y placas de Peyer.

l Linfocitos CD4 se ubican en el epitelio y actúan en la primoinfección.

l Linfocitos CD8 son responsables de la respuesta a la reinfección, están presentes en la lámina propia.

l Las células T citotóxicas atacan a los coccidios destruyéndolos.

l Los linfocitos Natural Killer NK: ocupan los espacios intraepiteliales, atacan sin intervención del Complejo mayor de Histocompatibilidad (MHC.)

l También intervienen Citoquinas (linfoquinas, monoquinas e interferón gama).

La respuesta inmune del huésped es similar a otros antígenos. Los protozoos estimulan ambos tipos de respuesta inmune: humoral y celular. Mientras que los anticuerpos responden a la presencia extracelular de parásitos en sangre y fluidos corporales, los parásitos intracelulares desencadenan una respuesta mediada por células.

Cuando la inmunidad celular se ha establecido es difícil medir el nivel de protección alcanzado ya que no hay inmunoglobulinas detectables en el suero para cuantificar el nivel de protección. La única forma de saber si las aves están protegidas es mediante la exposición con cepas patógenas de eimerias.

Algunas de las razones para la adopción de vacunas

• Carne libre de residuos
• Restauración de la sensibilidad a la drogas.

Formas de Administración

Las vacunas de coccidios se pueden aplicar por diferentes vías:

l Agua de bebida

l Ocular

l Aspersión en el alimento

l Aspersión con gabinete

l El método más utilizado hoy es el spray en gota gruesa, seguido por el método de agua de bebida.

l Algunos laboratorios han recomendado con sus vacunas la utilización de un gel para ofrecer a los pollitos BB el primer día de vida, ya que con su utilización los oocistos no decantan en los recipientes y la administración de la vacuna es más homogénea.

l El método de aspersión en el alimento fue recomendado en un primer momento, pero actualmente se aconseja el uso en spray con la máquina (spray cabinet).

l Ninguna compañía preconiza la utilización de la vacuna en agua de bebida ofrecida con bebederos niples.

Las vacunas pueden producirse a partir de cepas silvestres o bien vacunas modificadas atenuadas.

Vacunas cepas silvestres. Para su producción se basan en la siguiente metodología:

l Eimerias tomadas de campo.

l Test de sensibilidad a las drogas de uso habitual como coccidiostatos.

l Se replican las cepas en animales vivos, de forma tal de reproducir eimerias en gran cantidad.

l Se esporulan.

l Se envasan para ser aplicadas en cantidades controladas de acuerdo a la eimeria que se trate.

l En algunos casos se recomienda la aplicación de un coccidiostato (normalmente amprolium en reproductoras y ponedoras) para bajar la intensidad de la replicación de estas eimerias y controlar las lesiones que ellas producen.

l Es muy importante un eficiente método de aplicación. para el buen funcionamiento de estos productos.

Vacunas modificadas atenuadas. Las vacunas atenuadas se basan en la reducción del ciclo de vida a expensas de reducir ciclos de esquizogonias o que éstos sean más cortos o rápidos. Contemplan la obtención de líneas precoces

Método de obtención de líneas precoces.

l El método de obtención de líneas precoces fue inicialmente descrito por el Dr. Tom Jeffers, y consiste en la recolección, en forma repetida, de los primeros oocistos excretados luego de la infección. Estos oocistos fueron llamados "precoces" ya que, en comparación con sus progenitores, sus ciclos de vida son más cortos y los completan en menor tiempo.

l Este ciclo de vida más corto se basa en el desarrollo de menor número de esquizontes y de esta manera menor número de parásitos dentro del intestino de las aves.

l Esto convierte a estas líneas en una herramienta para la fabricación de vacunas vivas ya que conservan su capacidad inmunogénica igual a las de sus progenitores y no producen infecciones severas.

Se han desarrollado también vacunas a subunidades, basadas en la inyección de proteínas administradas a las reproductoras, dando lugar a la generación de anticuerpos con inmunidad cruzada contra las diferentes eimerias.

Algunos conceptos finales:

El conocimiento de las composiciones de cada producto es muy importante ya que hay situaciones donde se quiere reemplazar una vacuna con otra, y antes de llevar a cabo el cambio se debe analizar la composición y el espectro de protección que puede conferir ese biológico. También se puede tomar la decisión de incorporar un producto puntual de acuerdo a un desafío determinado en una zona o región. Por ello es importante saber qué eimeria se está inoculando en el galpón.

Los requerimientos para el desarrollo de inmunidad implican, por un lado la presencia de ooquistes vivos y por otro la obtención de un crecimiento de los parásitos, al menos en sus estados tempranos.

Las aves toman de la cama las eimerias de la vacuna y se vuelven a completar los ciclos en el epitelio intestinal del hospedador, eliminando oocistos. Esto se repite hasta el establecimiento completo de la inmunidad.

Los esporozoítos de primera generación son los de mayor poder inmunógeno por ello es importante tener en cuenta que la fase asexual es la responsable de la respuesta inmunitaria.

Las eimerias poseen un alto poder inmunógeno que aumenta con cada ciclo.

La profilaxis medicamentosa o las vacunas, en definitiva, se basan en la producción de inmunidad.

El principio por el cual se vacuna el primer día de vida con cepas atenuadas o no, es que se permite que a los 14 días se confiera la protección a los animales. De esta manera, entre los 21-28 días, se produce la resistencia ante un desafío.

El desarrollo de vacunas aún no ha concluido (son 7 especies con estricta especificidad de tejido), ya que se confiere inmunidad solo contra la eimeria presente en la vacuna.

Ante la disyuntiva implícita en el título de este trabajo acerca de si usar vacunas o anticoccidianos es importante tener en cuenta que la elección de ambas metodologías es igualmente válida dependiendo de las circunstancias de cada granja, zona, estación del año, anticoccidial o vacuna usada. Las vacunas son de utilización más frecuente en los meses de verano. Se aconseja, entonces, la rotación de vacunas y anticoccidiales en especial, teniendo en cuenta que algunos trabajos parecen indicar que las cepas vacunales pueden reemplazar a las de campo resistentes a anticoccidiales, en especial los ionóforos, permitiendo que éstas sean sensibles a dichos productos.

Finalmente se puede afirmar que a pesar de los esfuerzos continuos en el control de la coccidiosis, la producción avícola ha debido acostumbrarse a que ésta sea una enfermedad siempre presente, ya que su epidemiología la hace asociarse indisolublemente con las condiciones de confinamiento y hacinamiento en que se crían las aves. La prevención mediante las técnicas descriptas solo dará resultado si se tienen en cuenta las elementales normas de manejo, medio ambiente y bioseguridad, que serán las que, en definitiva, reducirán el más o menos intenso desafío al que se hallan expuestos los animales.

Referencias bibliográficas.

• Boero, Juan José. Parasitosis animals. 1967. Editorial Universitaria de Buenos Aires.
• Conway, DP.; McKenzie ME. Poultry coccidiosis Diagnostic and Testing Procedures. Second Edition. Pfizer Inc. 1991.
• Chapman, H. D. 2005. Perspectivas del control de la coccidiosis. The IXth International Coccidiosis Conference. Foss do Iguassu. Brasil.
• De Franceschi, M.; Barrios, H. 2005. Determination of the sensivity of the serial scraping method of intestinal mucosa in the diagnosis of subclinical coccidiosis. The IXth International Coccidiosis Conference. Foss do Iguassu. Brasil.
• De Franceschi M. & Mattielo, R. (1995). Diagnóstico de la coccidiosis subclínica por el método de los raspajes seriados. XIV Congreso Latinoamericano de Avicultura. Sgo. de Chile. Memorias presentación oral de Sanidad Avícola 10 - 14.
• Fowler, NG. Anticoccidial compendium. Janssen Pharmaceutica. 1995.
• González, H.; De Franceschi, M.; Barrios, H. 2005. Identificación de especies de coccidios en pollos parrilleros de Buenos Aires y Entre Ríos. Revista de Medicina Veterinaria 86, 4: 154-160.
• Long, Peter L. The Biology of the coccidia. 1982. University Park Press. Baltimore.
• Long P. & Reid W. (1982). A guide for the diagnosis of coccidiosis in chickens. Rev. Report 404 (Report 355, revised) Athens, GA. College of Agriculture Experimental Station, Univ. of Georgia (USA).
• Mattiello, R., Doti, F. Boviez, J. Muruzeta, A., Ruiz J. 1990. Método de diagnóstico de la coccidiosis subclínica por raspajes seriados de mucosa intestinal. Proc. of VIII European Poultry Conference. Barcelona, España.: 595-598.

Las primeras 24 horas de la vida de los pollitos

Tomado de Engormix.com

AUTOR: Dr. Amir H. Nilipour, Ph.d. Director de Aseguramiento de Calidad e Investigación Empresas Melo, S.A. Panamá City, Rep. de Panamá

Se estima que más de 35 billones de pollitos broilers se producen alrededor del mundo anualmente, 20 billones de los cuales se producen en continente de América. Actualmente la industria avícola se inclina hacia prácticas de producción más intensivas y un aumento en la automatización, las prácticas de cuidado con cariño que una vez se utilizaron en la cría de pollitos han sido reemplazadas por una mentalidad de producción en masa. Como consecuencia, los pollitos recién nacidos están siendo sometidos a numerosas situaciones de estrés en las primeras horas antes y después de nacidos. Estos efectos adversos durante las primeras horas críticas después de nacidos pueden aumentar el porcentaje de mortalidad temprana. Estos factores de estrés también pueden influir el rendimiento final, resultando en una reducción del peso final y un aumento en la conversión de alimento y el costo de la libra de carne. El personal de las fincas debe entender que ellos son los padres adoptivos de estos pollitos. La falta de atención a los detalles impide que una empresa crezca y obtenga ganancias.

Bioseguridad: Sin salud no ganamos. El objetivo de cualquier dueño de una granja de broilers es recibir pollitos de la mejor calidad. Los pollitos estresados, bajos de peso, deshidratados o débiles no van a rendir a su máximo potencial genético. Asumiendo que los pollitos llegaron a la finca en buena salud, es esencial entonces que la finca esté lo más libre de contaminación posible. Esto significa que la granja ha sido lavada apropiadamente, desinfectada y que se ha esperado el tiempo requerido para recibir el siguiente lote. Pollitos saludables pueden infectarse y morir después de llegar a una granja contaminada o mal saneada. Los buenos productores reconocen que las pérdidas por brotes de enfermedad son mayores bajo malas condiciones de sanidad, que cuando las casas se han limpiado y desinfectado completamente. Antes de llevar pollitos se deben seguir estrictas prácticas de bioseguridad y lo más importante es prevenir la entrada de visitantes innecesarios o no autorizados. Para visitar una finca los visitantes deben cambiar su ropa (botas y batas) y bañarse antes de entrar. Se debe tener cuidado de visitar granjas en el orden apropiado, por lo general de las más jóvenes a las más viejas. El sentido común indica que las granjas donde hay enfermedades o se sospecha de ellas deben ser visitadas de último. Es más fácil recibir pollitos saludables y mantenerlos saludables durante el ciclo de producción. Como parte del plan de bioseguridad debemos asegurarnos que los pollitos recién nacidos sean vacunados adecuadamente en las nacedoras. El propósito de las vacunas es asistir a los pollitos a resistir enfermedades específicas, no estresarlos más. Vacune solamente con vacunas que sean necesarias y sean administradas en la forma recomendada.

La parte más crucial de la vida de un pollito: Las 24 horas antes de que los pollitos lleguen a la granja son las más importantes. Los galpones deben estar listos e inspeccionados un día antes de que lleguen los pollitos. A continuación algunos parámetros básicos que deben tomarse en consideración antes y durante las primeras horas de vida de los pollitos para facilitar un buen inicio y final.

Cambios genéticos: En las dos últimas décadas, la edad de procesamiento para un pollo broiler de 5 lbs. se ha reducido de 60 días a menos de 40. Esto significa que la primera semana de vida de un pollito broiler representa el 20% de su vida, comparado con 10% hace sólo 20 años atrás. Este crecimiento rápido pone más demanda en el manejo durante la primera semana de vida, dejándole al productor menos tiempo para ajustarse a las deficiencias. El rendimiento perdido por mal manejo no puede ser compensado ya que no hay tiempo. El hecho es que esto no va parar nunca y va a seguir mejorando cada día más, menos tiempo y más peso, menos conversión y mejor % de mortalidad. Esto nos pone mas a presión a cuidar cada fase de cría de las aves y NO dejar afecta un ritmo de crecimiento adecuado desde cero horas de vida. NO se puede permitir ni un segundo de manejo menos optimo. Recordamos que en una integración los segundos se acumulan a miles y miles de horas y más perdidas totales.

Calidad del aire: Después de la bioseguridad, el factor más importante es brindar aire caliente, fresco y rico en oxígeno para los pollitos recién nacidos. La tráquea de los pollitos se irrita normalmente cuando se les encajeta por varias horas. Los pollitos están siempre expuestos a formalina y aire contaminado al momento de nacer. Es importante asegurarse de que la calidad del aire es óptima al momento de la llegada de los pollitos y que este no contiene niveles altos de CO2 y amonia. Cantidades excesivas de estos irritantes pueden causar depresión, deshidratación, enflaquecimiento y eventualmente la muerte. Una mala ventilación puede resultar en una acumulación de monóxido de carbono alcanzando niveles tóxicos. La intoxicación causa una condición irreversible que no puede corregirse con ventilación adicional. Mantener una calidad de aire aceptable es un arte y puede lograrse manipulando las cortinas, extractores, etc. El propósito es brindar aire fresco a los pollitos, sin enfriarlos o gastar combustible. Los supervisores de fincas broilers deben entender como manejar las fincas para brindarles aire fresco todo el tiempo, sin importar las condiciones.

Temperatura de cría: El ciclo de producción de los broilers es corto. Durante aproximadamente la mitad de sus vidas los pollitos broiler tienen un sistema termorregulador inmaduro y no pueden controlar su propia temperatura interna cuando se exponen a temperaturas diferentes. Por lo tanto, la temperatura de cría es crucial en el crecimiento óptimo durante los primeros días de vida la cual depende del administrador de la finca. Las prácticas de manejo deben modificarse dependiendo de las condiciones climáticas y la región. Sin embargo, una regla general para todos los pollitos durante las primeras 24 horas, sin excepción, es que se les debe brindar temperaturas ambientales de 88-90 grados F. Los experimentos que ha llevado a cabo el autor en la estación experimental del Grupo Melo (Tabla 1) han demostrado que cuando los pollitos se criaron con temperaturas más bajas se les afectó el crecimiento, aumentaron su conversión y mortalidad y hubo una reducción en los índices de 40 puntos. El costo de producir una libra de carne usando temperaturas de cría por debajo de lo óptimo fue de 1.6 centavos más por libra. El porcentaje de mortalidad para los pollitos criados bajo temperaturas por debajo de lo óptimo fue más de 8% con 5% debido a ascitis que aumentó cuando se usaron temperaturas de cría más bajas.

Tabla 1. Efecto de las diferentes temperaturas de cría en los pollos broiler hembras y machos a los 42 días de edad

Parámetros	88-90F	Fresco	Frío
Peso en gramos 7 DDE	138.11	129.10	120.78
Peso en gramos	2335.98	2298.47	2258.38
Peso en libras	5.145	5.063	4.974
Conversión	1.803	1.829	1.862
Promedio de peso diario gr.	55.62	54.73	53.77
% eliminados	0.42	2.92	3.75
% Ascitis	1.67	1.67	5.00
% Mortalidad total	2.92	5.83	8.33
Índice 42 días	299.42	281.72	264.68
Más centavos vs. control	0.00	0.78	1.66

Antes de la llegada de los pollitos, evalúe las temperaturas del área de cría con un termómetro digital. Determine las temperaturas en la superficie de la camada y aproximadamente 2 cms. encima de ésta, que es donde los pollitos van a estar. Después de colocados los pollitos, verifique la conducta de los pollitos y el patrón de esparcimiento para determinar si la temperatura y ventilación son adecuadas. En realidad no se necesita un equipo sofisticado. Simplemente observando los pollitos de cerca nos ayuda a determinar si existen problemas. Los administradores de las fincas necesitan entender las características de los pollitos contentos versus pollitos estresados.

Agua: A los pollitos se les puede privar de agua y alimento por 100 horas o más ya que reciben nutrientes de los residuos del saco vitelino. Sin embargo, esto no significa que el consumo de alimento y agua debe ser restringido. Lo ideal es que los pollitos sean colocados en las fincas y se les brinde agua y alimento en menos tiempo posible desde el momento en que nacen. Cualquier retraso prolongado puede deshidratar los pollitos y disminuir su peso. Si se esperan retrasos prolongados existen hidratantes nutritivos en el mercado que pueden colocarse en las cajetas de los pollitos al ser transportados a las fincas. Se debe verificar la pureza, calidad y temperatura del agua ya que el agua contaminada puede propagar enfermedades y causar diarrea, deshidratación y muerte en los lotes jóvenes. Si los pollitos son transportados por largos períodos de tiempo, se recomienda darles agua lo más rápidamente posible. Muchos administradores de fincas añaden al agua una sustancia dulce parecida al azúcar (4% solución) las primeras horas de vida de los pollitos. El azúcar ayuda a los pollitos a ganar la energía perdida y los estimula a consumir alimento. El agua azucarada también ayuda a aflojar los intestinos compactados y prepararlos para el alimento a venir. Después de añadir el azúcar se recomienda agregar algún tipo de vitaminas al agua durante los primeros tres días de vida para aumentar la vitalidad de los pollitos. Con excepción del tiempo en que se vacuna por agua, el agua de beber debe estar debidamente clorinada. El nivel de cloro en los bebederos debe ser 1ppm niples, 2 ppm campana (plasón) y 3 ppm canaletas, en otras palabras agua debe ser siempre clorinada.

Microclima de los pollitos: El ambiente de los pollitos recién nacidos debe ser lo más ideal posible. Este ambiente debe ser comparado con el micro ambiente que se les brinda a los bebés recién nacidos. El área debe ser cómoda, caliente, limpia y se le debe atender 24 horas.

Ø Densidad del equipo: Antes de que lleguen los pollitos, el supervisor de la finca debe asegurarse de que el área de cría esté completamente lista y adecuada para la cantidad de pollitos que vayan a llegar. Esto incluye espacio adecuado de piso, comederos, bebederos, camada fresca y de buena calidad en el área de cría, etc. Además de tener la cantidad adecuada, la distribución también es crítica. No tendría sentido recibir pollitos de buena calidad para luego depravarlos de agua y alimento por falta de equipo como comederos y bebederos.

Ø Calidad de la camada: Se le debe prestar mucha atención a las condiciones de la camada. Cualquier camada vieja, compacta, húmeda o polvorienta debe ser reemplazada con camada de buena calidad. En las áreas donde no se pueda cambiar la camada después de cada ciclo de producción ya sea por su costo, disponibilidad o dificultad de botar la vieja, se debe cambiar en los lugares donde los pollitos vayan a colocarse la primera semana, y en las áreas donde esté compacta. Si no puede cambiarse la camada en el área de cría, se pueden poner periódicos durante las primeras 24 horas en esta área. El objetivo es reducir las oportunidades de exponer los pollitos recién nacidos en sus primeras horas a altos niveles de contaminantes, mientras su sistema inmunológico aún es inmaduro y estén absorbiendo los residuos del saco vitelino. La temperatura de la camada, su textura, contenido de humedad y tipo pueden afectar a los pollitos a sobrevivir y luchar en su nuevo ambiente. Los pollitos pueden perder gran parte de la temperatura del cuerpo a través de la piel de sus patas al contacto con la camada. Por consiguiente, la camada que no haya sido calentada antes de que lleguen los pollitos puede reducir dramáticamente la supervivencia de éstos. En lugares fríos se recomienda calentar el área de cría 24 horas antes de la llegada de los pollitos para asegurarse que la temperatura de la camada esté caliente. Para evaluar la temperatura de la camada se puede usar un termómetro o simplemente se puede determinar la temperatura de las patas tocándolas.

Ø Alimento y agua: El manejo del microclima también incluye el alimento y el agua. El agua debe estar a temperatura ambiente y el alimento debe tener partículas de un tamaño que sea óptimo para los pollitos. Un pollito recién nacido se compone de 85% agua, si pierde 10% de agua el pollito es eliminado y cuando pierde 20% se deshidrata y puede morir. Es importante, por lo tanto, hidratar a los pollitos rápidamente, lo cual estimulará el consumo de alimento y mejores pesos. Si el agua y el alimento se consumen en suficientes cantidades, la temperatura en el área de cría es adecuada y se les brinda una buena calidad de aire, los pollitos broiler deben cuadruplicar su peso al nacer. Para verificar si los pollitos están consumiendo cantidades adecuadas de alimento, se recomienda seleccionar algunos pollitos y palparles el buche, el cual debe estar casi lleno. Si el buche se siente medio vacío o vacío debe haber algún problema de manejo y debemos revisar cuidadosamente los puntos anteriormente mencionados. Nunca es tarde para hacer correcciones.

Mensajes para llevar

Antes de que lleguen los pollitos a las granjas, sin excepción inspeccione las galeras para asegurarse que existe la cantidad de equipo adecuado para empezar. La granja debe estar 100% listo, lavado, desinfectado y declarado bioseguro por parte de los técnicos de laboratorio que tiene todas las cualidades de recibir los miles de pollitos de alta valor para la empresa. Si empezamos mal no hay tiempo para compensar el crecimiento perdido ya que la vida de un pollito es menos de 1000 horas y cada hora representa 0.10% de la vida del pollito. En un período de 24 horas podemos perder 2.4% de ganancia. Es de suma importancia que miden las ganancias de pesos en las 1eras 24 horas y asegurar que los pollitos han ganado por lo menos entre 10 a 15 gramos de peso y palpar los buches a ver si tiene suficiente alimento consumido. Muchos productores reconocen que el rendimiento perdido durante el primer día o la primera semana se va a reflejar en los resultados finales.

EFECTOS DE LA NUTRICION EN LA INFERTILIDAD, MORTALIDAD EMBRIONARIA Y NACIMIENTOS

Traducción del artículo del Dr. Steve Tullett aparecido en The Poultry Site.com

Por Traducciones Avícolas

Los efectos de las deficiencias de vitaminas y minerales en la mortalidad embrionaria y en las malformaciones están bien documentados. El conocimiento general de los requerimientos de suplementación de la ración de reproductoras es muy bueno y las deficiencias severas de vitaminas y minerales son relativamente inusuales hoy en días debido a que las premezclas vitamínico minerales son generalmente confiables si los proveedores de estas están acreditados en ISO, HACCP y GMP. Sin embargo, algunas veces aparecen problemas, encontrándose algunos de los hallazgos listados a continuación:

INFERTILIDAD: esta puede estar asociada con una deficiencia de vitamina A, vitamina E o Selenio, particularmente en las raciones de los machos reproductores.

MORTALIDAD EMBRIONARIA TEMPRANA: puede estar asociada con una deficiencia de vitamina A (falla en el desarrollo del sistema circulatorio), vitamina E (falla circulatoria), Biotina, Niacina, Acido Pantoténico, Cobre, Selenio o Tiamina. Un exceso de Boro o Molibdeno puede incrementar la proporción de estas muertes tempranas también.

MORTALIDAD EMBRIONARIA MEDIA: ha sido asociada con una deficiencia de vitamina B12, Riboflavina, Fósforo y Zinc.

MORTALIDAD EMBRIONARIA MEDIA TARDIA: ha sido asociada con deficiencia de vitamina B12, Niacina, Piridoxina, Acido Pantoténico y Riboflavina.

MORTALIDAD EMBRIONARIA TARDIA: ha sido asociada con deficiencia de vitamina B12, vitamina D, vitamina E, vitamina K, Acido Pantoténico, Riboflavina, Acido Fólico, Biotina, Calcio, Manganeso, Magnesio, Fósforo Zinc, Yodo, y Tiamina. Un exceso de Selenio puede incrementar la proporción de estas muertes a diferencia de las anteriores.

El exceso de Yodo y vitamina D puede causar altas perdidas embrionarias.

Conseguir el nivel oprimo de suplementación de Selenio puede ser muy difícil debido a los niveles variables de Selenio en el suelo (y por ende en las plantas usadas como ingredientes), dependiendo de la ubicación geográfica. En algunos casos el uso de Selenio inorgánico ha mejorado la fertilidad y los nacimientos.

En casos de deficiencias prolongadas de vitamina B12 y Niacina, la mortalidad embrionaria puede cambiar de estado temprano a estado tardío en la incubación, y de estado tardío a estado temprano en casos de prolongadas deficiencias de Riboflavina. La Niacina puede formarse del Triptófano, por lo que una deficiencia de la primera usualmente es el resultado de un antagonismo con otros componentes de la dieta. Una deficiencia de Acido Linoleico puede afectar todos los estadios embrionarios.

Los requerimientos de suplementación para la producción de huevos y su índice de nacimiento difieren. La producción de huevos puede estar afectada por deficiencias de energía, aminoácidos esenciales, vitamina A, Piridoxina (B6), B12, Magnesio, Manganeso, Sodio, Yodo y Zinc; mientras que deficiencias de vitamina D, Calcio, Fósforo o Zinc pueden ejercer un efecto en los nacimientos a través de su efecto en la calidad de la cáscara.

Un exceso de proteína cruda puede reducir la fertilidad y una baja proporción energía proteína en raciones de reproductoras pueden reducir el índice de nacimientos.

La contaminación de las raciones de reproductoras con anticoccidiales ionoforos (en la planta de alimento) o con ciertas micotoxinas (provenientes de los ingredientes) puede también reducir la tasa de nacimientos.

Algunas malformaciones específicas en embriones en el último estadio de la incubación han sido asociadas con deficiencias tales como:

• Vitamina B12: pico corto, pobre desarrollo muscular de las patas, perosis, mortalidad temprana alta.
• Vitamina D: pobre crecimiento, huesos blandos, pico superior mas corto.
• Vitamina e: hemorragias en pollitos luego de nacidos.
• Vitamina K: alto nivel de mortalidad tardía, vísceras ectópicas, y hemorragia en muertes tardías.
• Biotina: patas, alas y dedos torcidos y cortos, picos de loro.
• Acido Fólico: patas dobladas, membranas interdigitales, picos de loro.
• Niacina: anormalidades de la cara, ausencia de pico.
• Acido Pantoténico: hemorragias subcutáneas, anormalidades en el emplume.
• Riboflavina: enanismo, dedos curvos, edema y aporreos.
• Yodo: cierre incompleto del ombligo, periodos de incubación prolongados.
• Hierro: anemia, sistema circulatorio pálido en general.
• Manganeso: piernas cortas, tendones resbaladizos, picos de loro, muerte entre 18 y 21 días, cabeza globular, alas cortas, protuccion del abdomen, edema.
• Zinc: anormalidades de la cabeza y espina, ojos pequeños.

Exceso de Boro, por ejemplo de los insecticidas usados en el tratamiento de las excretas han resultado en anormalidades de la cabeza y excesos de Selenio pueden estar relacionadas con mortalidades tardías, dedos doblados, alas cortas y picos cortos o ausentes.

Perdidas en la acción de las vitaminas pueden provenir de un inadecuado almacenamiento de las premezclas.

El tratamiento por calor al alimento durante el acondicionado y paletizado puede resultar en la degradación de algunas vitaminas. Estudios de recuperación de vitaminas deben ser conducidos en la planta de alimento para determinar el nivel de degradación de estas durante el tratamiento con calor. Estos niveles vitamínicos disponibles deben ser ajustados para que el alimento final contenga los niveles deseados de estas vitaminas.

Es importante recalcar que el desarrollo de anormalidades en embriones no solo es causado por deficiencia o excedencia de vitaminas o minerales. Estos también provienen de otras situaciones, tales como condiciones de incubación, por ejemplo, alta temperatura.

GUIA DE INCUBACION

Haz click en el siguiente enlace y encontraras un guia de incubacion que se deja leer
Guia de incubacion

CRECIMIENTO EMBRIONARIO EN FOTOS

A continuacion les presentamos en el siguiente vinculo las diferentes fases de desarrollo embrionario en fotografias. Clickea en el siguiente vinculo
Desarrollo embrionario

Desinfección y resistencia: ¿realmente la rotación es el camino a seguir?

Tomado de WattPoultry.com

Dr. Stephen Lister, Consultor, Inglaterra

La desinfección inadecuada puede tener enormes implicaciones en costo. Pero, ¿cuál es la mejor estrategia para garantizar que se haga bien el trabajo?

Necesito rotar el desinfectante? Esta es una pregunta legítima que se puede hacer el avicultor, especialmente conforme se concientizan de la necesidad de rotar otros productos que usan para el control de enfermedades para evitar que se desarrollen problemas de resistencia.

Está bien comprobada la necesidad responsable y comprensible de rotar los coccidiostatos y antibióticos en el sector avícola para evitar la resistencia en el desarrollo de las coccidias y bacterias. Así que ¿lo mismo aplica para los desinfectantes utilizados para combatir las enfermedades virales y bacterianas?

La respuesta radica en cómo reaccionan los organismos dañinos a los diferentes productos y químicos con los que repetidamente entran en contacto. Para ciertos antibióticos y coccidiostatos, los organismos pueden neutralizar sus efectos mediante el cambio de la forma en que crecen y se desarrollan, de tal manera que prosperen las poblaciones resistentes.

Tipos de resistencia

Para poder entender la situación, es necesario considerar los posibles tipos de resistencia que se pueden desarrollar. Se pueden describir como resistencia innata o adquirida.

La resistencia innata es la capacidad integrada de un patógeno de resistir la exposición a una clase particular de desinfectantes. Por ejemplo, se ha mostrado que algunos virus son altamente resistentes a muchos desinfectantes, entre los que se incluye el cloro, yodo, aldehídos, fenólicos, compuestos de amonio cuaternario (CAC) y álcalis, pero son susceptibles a desinfectantes oxidantes a base de peroxígeno.

La resistencia adquirida sucede cuando un patógeno que previamente era susceptible a una clase o grupo de desinfectantes se hace menos susceptible a estos compuestos debido a la exposición repetida a ellos.

La clave para controlar la resistencia innata y el potencial de selección de patógenos que son resistentes a ciertos desinfectantes es bastante sencilla: escoja desinfectantes oxidantes a base de peroxígeno con un espectro de actividad tan amplio como sea posible.

Este espectro, y de ahí la selección, debe basarse en los resultados de pruebas sólidas, relevantes e independientes. Luego, es básico garantizar que se use correctamente el agente de amplio espectro y que se evite todo factor externo que pueda afectar su actividad.

Factores externos que aumentan la resistencia

Hay una serie de factores externos que podrían incrementar el desarrollo de la resistencia a un desinfectante. La capacidad de un desinfectante de funcionar bien, a pesar de estos factores, va a contribuir al valor de su uso diario.

La temperatura es un factor importante. Está bien establecido que la eficacia de los desinfectantes puede disminuir conforme disminuya la temperatura. Por el contrario, puede mantenerse la actividad de un desinfectante oxidante a base de peroxígeno contra varios virus a 4C.

Los altos niveles de desafío orgánico residual van a interferir con la capacidad del desinfectante de eliminar patógenos y de ahí llevar a problemas de resistencia "aparente". Por lo tanto, es esencial limpiar a fondo antes de la desinfección, en lo que se ha mostrado que el uso de detergentes industriales puede formar parte integral del proceso.

Sobre este comentario, es importante darse cuenta de que los diferentes fabricantes mencionan los datos de pruebas de eficacia que usan diferentes niveles de simulación de desafío orgánico. Debe tenerse esto en cuenta cuando se elija un desinfectante.

El error humano puede ser también una causa importante de problemas de resistencia aparente con los desinfectantes. Esto puede incluir factores tales como un mal mezclado, dilución inadecuada del desinfectante, tasas imprecisas de aplicación y permitir el uso de agua dura. La evaporación rápida de las superficies en climas cálidos puede ser también un factor significativo.

También puede llevar a problemas si no se deja que haya un tiempo adecuado de exposición. Aquí va a ayudar el uso de un desinfectante que elimine más rápidamente con pequeños incrementos en la concentración, otra razón de escoger desinfectantes oxidantes a base de peroxígeno que demuestren una actividad más rápida.

Resistencia adquirida

El desarrollo de la resistencia adquirida a los desinfectantes es un área de creciente interés para los investigadores. Hasta hace poco, la resistencia adquirida se había basado en evidencias anecdóticas, pero los estudios de campo y de laboratorio están arrojando luz sobre esta área de potencial importancia.

Se ha mostrado que la resistencia a los CAC en Pseudomonas spp. era mayor en un sistema en el que previamente se habían usado y que un panel de bacterias era más resistente a los glutaraldehídos en granjas donde se habían usado antes.

En un estudio de 286 aislados de salmonela recolectados en granjas avícolas danesas, o especialmente adaptados para imitar el desarrollo de la resistencia, se probó la resistencia contra el formaldehído, CAC, combinaciones de glutaraldehído/CAC, fenólicos y desinfectantes a base de peroxígeno

Los investigadores hicieron notar que la mejor eficacia se encontró con un desinfectante oxidante a base de peroxígeno, además de que también hicieron notar que el uso previo de una desinfectante oxidante redujo la cantidad necesaria para una desinfección repetida. No hubo necesidad de rotarlo para dejar los desinfectantes oxidantes a base de peroxígeno.

Un grupo posterior de estudios se enfocó el desarrollo de la resistencia a los desinfectantes después de la exposición repetida a CAC, mezclas de glutaraldehído/CAC, fenólicos y el desinfectante oxidante a base de peroxígeno. Encontraron que la salmonela expuesta a desinfectantes respondió con el incremento de las bombas de flujo activo en la célula bacteriana.

Estas bombas bombean activamente el desinfectante hacia fuera de la célula y por lo tanto, hace que ésta sea menos susceptible a este compuesto.

Lo que es más importante, es que encontraron que la salmonela expuesta al desinfectante oxidante a base de peroxígeno no demostró fácilmente este efecto y que no es probable que lo bombee para sacarlo de la célula. Esto significa que la exposición repetida a un desinfectante oxidante es mucho menos probable que conduzca a resistencia adquirida al desinfectante que otros desinfectantes: otra razón del porqué no hay necesidad de hacer rotación.

Un hallazgo adicional importante fue que estas bombas de flujo activo que llevan a la resistencia a la desinfección también pueden bombear antibióticos hacia afuera. Esto significa que el uso repetido de los CAC, mezclas de glutaraldehído/CAC o fenólicos puede aumentar la resistencia a los antibióticos, pero que el uso repetido de un desinfectante oxidante tiene el menor potencial de que esto suceda.

Estrategia sencilla

Estos hallazgos indican fuertemente que la rotación de desinfectantes de diferentes clases presenta poco o ningún beneficio. Para lograr la mejor eficacia desinfectante, debe escogerse un desinfectante con un amplio espectro de actividad probado independientemente contra los organismos as controlarse. Debe ser capaz de funcionar en todas las temperaturas, además de que deben estar limpias aquellas superficies en las que se aplica. Lo más importante es que se debe usar correctamente.

Para evitar la resistencia adquirida, necesita seleccionarse un desinfectante que tenga poco impacto sobre las bombas de flujo activo y que se vea muy poco afectado por éstas. De preferencia, el uso repetido de este desinfectante debe reducir el nivel de este compuesto que se vaya a necesitar en el futuro. El uso de un desinfectante que logre todos estos requisitos básicos va a ayudar a minimizar la resistencia a la desinfección y a evitar la necesidad de rotar los desinfectantes. - Poultry International